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制备坐骨神经标本心得体会

时间:2018-01-04 22:21

制备的坐骨神经腓肠肌标本兴奋性如何?有哪些操作体会?

好1杀青蛙很恶心2只剩下神经和肌肉时觉得很新奇3想到了人,突然觉得世间万物不过一堆细胞4自然界真是奇妙又单一

生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备

坐骨神经腓肠肌标本的制备和神经干动作电位的观察与传导速度的测定1、实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。

2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。

3.观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形,并了解其产生的原理。

4.学习蛙和蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。

2、实验材料:1.实验对象:蟾蜍2.实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线、PC机、信号采集处理系统、神经屏蔽盒等。

3、实验原理:神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位,标志着神经发生兴奋。

如果在离体神经干的一段施加刺激,从另一端引导传来的神兴奋冲动,可以记录出双相电位,加入在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损伤,阻断其兴奋传导能力,这时候记录出的动作电位就成为单相电位。

神经细胞的动作电位是以全或无的方式产生的。

但是,复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的增加而增大的。

如果在远离刺激点的不同距离处分别引导离体神经干动作电位,两引导点之间的距离为m,在两引导点分别引导出的动作电位的时相差为s。

即可按照公式v=m\\\/s来计算出兴奋的传导速度。

蛙类的坐骨神经干属于混合性神经,其中包含有粗细不等的各种纤维,其直径一般为3-29um,其中直径最粗的有髓纤维为A类纤维,传导速度在正常室温下为35-40m\\\/s。

神经每兴奋一次极其在兴奋以后的回复过程中,其兴

生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备

生物实验报告姓名:班级:日期:同组者:实验序号:实验题目:坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。

2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。

实验原理:两栖类动物的离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。

因此在生理实验中常用蟾蜍的坐骨神经——腓肠肌标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激强度、刺激频率与肌肉收缩反应的一些规律以及骨骼肌的收缩特性等。

实验对象:蟾蜍实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线等。

实验方法及步骤:1、破坏脑脊髓部位枕骨大孔。

如果蟾蜍四肢松软,呼吸消失,表示脑脊髓已完全破坏,否则按上述方法再进行捣毁。

2、剪去躯干上部及内脏在骶髂关节前1cm处用金冠剪(粗剪)剪断脊柱(可在下肢前端)。

沿脊柱切口向下剪开两侧腹部皮肤至耻骨处,将头、前肢、内脏及腹部软组织全部剪掉,放于污物盘,只保留下端脊柱和下肢。

在腹侧脊柱两旁可看到腰骶神经丛。

注意切勿触及或损伤坐骨神经。

3、剥后肢皮肤左手持镊子夹住脊髓断端,右手捏住断端边缘,剥掉全部后肢皮肤。

将标本放于盛有任氏液的培养皿内,将手和手术器械洗净。

4、分离两腿用金冠剪剪去尾骨杆(骶骨),沿脊椎中线将脊柱剪开,再沿耻骨联合正中央剪开两侧大腿,使两

掌握制备坐骨神经腓肠肌标本技术对生理学实验有何意义

在生理学实验中,坐骨神经-腓肠肌标本是研 究神经肌肉生理最常用的对象,经常用来研究神经肌肉的兴奋性,刺激与反应的规律,肌肉 收缩的特点,兴奋性的周期性变化等.

实验中 在制备的坐骨神经-腓肠肌标本上用电刺激坐骨神经引起腓肠肌收缩整个过程中依次发生了那些生理活动

记不清楚了。

大概就是去极化,神经冲动的传播,神经肌肉接头递质的释放,肌肉的收缩吧。

电刺激引起膜电位发生变化,导致钠通道开放,钠内流,引起细胞膜去极化,产生动作电位;动作电位以神经在神经纤维上双向不衰减扩散,要使用的青蛙的话应该还有一个有髓鞘神经纤维在郞飞结之间跳跃性传递;神经冲动传导至神经肌肉接头的时候,引起接头前膜去极化,钙通道打开并钙离子内流,装有乙酰胆碱的突触小泡与前膜融合,释放乙酰胆碱,经接头间隙接触接头后膜(肌膜)上的乙酰胆碱受体,引起微终版电位,多个突触小泡的总和形成终版电位,引发肌膜的去极化,剩余的乙酰胆碱被间隙内的胆碱酯酶摄取并代谢;肌膜去极化后,产生动作电位,沿T管和肌膜传播,引起L钙通道开放发生构象转变,使连接肌质网内的钙离子释放,释放入细胞质内的钙离子与肌钙蛋白结合,改变原肌球蛋白的构形,暴露肌动蛋白位点,使粗肌丝横桥上的肌球蛋白与之结合,在ATP水解的作用下,横桥摆动,粗细肌丝相互滑动,引起肌肉收缩。

坐骨神经---腓肠肌标本制备时,剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗?为什么?

个人觉得如果想有好的实验效果最好不适应自来水,因为水的离子成分和标本很不一样这就和人体要对应生理盐水一样的道理应该是用林格氏液冲洗比较合适

蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备实验

设计性试验:蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备一、实验目的:1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓方法,并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。

2、学习并掌握蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法二、实验材料:实验动物:牛蛙实验器材:常用手术器械,蜡盘,蛙板,固定针,锌铜弓,培养皿,滴管,粗棉线,任氏液,纱布三、实验步骤:1.破坏脑脊髓:左手握蟾蜍,食指下压吻端,拇指按压背部,其余三指紧贴腹部。

找到枕骨大孔刺入1-2mm,分别捣损脑组织和脊髓(脑和脊髓完全破坏的标志是:呼吸停止,四肢松软并处于对称位置)2.减除躯干上部及内脏:在骶髂关节水平上2cm处剪断脊柱,去除头、前肢和内脏,保留部分脊柱和下肢。

用任氏液小心冲洗坐骨神经及其周围组织上的血液。

3.剥皮:剪去尾骨,剥去余下组织的皮肤,沿脊柱正中到耻骨联合将标本剪开,标本放到盛有任氏液的烧杯中。

4.有利坐骨神经:腓肠肌向上将标本固定于蛙板上,由脊柱仔细将坐骨神经分离至膝关节处,并在脊柱旁结扎。

5.制作成坐骨神经-腓肠肌标本:剪断膝关节周围所有大腿肌肉,剪断股骨(保留约1cm),在跟腱处结扎并剪断腓肠肌,将膝关节以下小腿部分全部剪除,剩下即为坐骨神经—腓肠肌标本。

6.标本检验:用锌铜弓轻轻刺激坐骨神经,腓肠肌收缩即表示标本制备完好。

注意事项1.操作过程中,勿污染、压榨、损伤、过度牵拉神经和肌肉。

2.剥坐骨神经时要非常小心,避免损坏神经外的结缔

没什么在制备坐骨神经腓肠肌标本过程中要不断滴加任氏液

为了稀释细胞外液中的K+浓度,减小标本兴奋性。

生理学实验,蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备 如何保持标本的正常机能

1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润,常加任氏液,最好先泡一会

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